Sergio Mella M. 1,2,
Raúl Zemelman Z.2,
Juan Aguilera A.1,
Sergio Opazo S.1,
Javier Opazo V.3 y
Paula Veloso F.3
- Servicio de Medicina Interna
Hospital Clínico Regional de Concepción.
- Departamento de Microbiología,
Facultad de Ciencias Biológicas. Universidad de
Concepción.
- Internos de Medicina
PROPIEDADES QUIMICAS
Imipenem pertenece al grupo de los
carbapenémicos, compuestos que tienen estructura
química que difiere del núcleo penam, o núcleo de las
penicilinas, porque poseen un átomo de carbono en vez de
azufre en la posición l del anillo tiazolidina. Además,
presentan un enlace no saturado entre los carbonos 2 y 3
de este núcleo (1, 2, 3).
Los compuestos carbapenémicos derivan
de la tienamicina, antibiótico producido por Streptomyces
cattleya (1, 4, 5) y originalmente
identificado en el Merck Institute for Therapeutic
Research (1979). Tienamicina es químicamente inestable,
al igual que otros carbapenémicos, como los ácidos
olivánicos (3, 6). La modificación química de
tienamicina que dio por resultado N-formimidoil
tienamicina permitió obtener un compuesto estable, tanto
en estado sólido como en solución concentrada y que
mantiene la potencia y espectro de actividad de la
molécula madre. Este nuevo compuesto fue nominado como
MK 0787 (7) y, finalmente, como Imipenem (3, 8).
Posteriormente, en ensayos de tipo
farmacológico, se comprobó que esta molécula era
hidrolizada por una peptidasa renal, la dehidropeptidasa
1, ubicada en el borde "en cepillo" de las
células de los túbulos renales proximales (8, 9, 10).
Por esta razón, se obtuvo un compuesto inhibidor de esta
peptidasa, cilastatina, que carece de actividad
antibacteriana y se administra asociada, cantidades
equimolares, con Imipenem en la formulación comercial,
permitiendo de este modo que el antibacteriano no sea
degradado por el peptidasa renal (11, 12, 13).
Cilastatina no altera la actividad antimicrobiana de
Imipenem y se postula que puede disminuir su toxicidad
(9, 10, 11).
Otra propiedad química de Imipenem,
que influye en su relación estructura-actividad, es
aquella que explica parte de su estabilidad a
b-lactamasas bacterianas. En efecto, la cadena lateral
hidroxi-etílica en configuración trans difiere de los
radicales acilamino en configuración cis presentes en el
resto de las penicilinas y cefalosporinas (3, 9, 13) y es
el que protege el anillo b-lactámico de la hidrólisis
enzimática. Además, el bajo peso molecular del
compuesto y su naturaleza zwitteriónica (balance
equilibrado entre cargas positivas y negativas) permiten
explicar en parte la elevada penetración a través de la
membrana externa de bacilos Gram negativos (14, 15).
Otra propiedad que distingue a Imipenem
del resto de los antibióticos b-lactámicos, es el
efecto post antibiótico que ejerce tanto sobre bacterias
Gram positivas (1 a 3 horas) como sobre Gram negativas (2
a 3 horas) (8, 11, 13).
PROPIEDADES
MICROBIOLOGICAS
Mecanismo de acción
Imipenem se une con alta afinidad a las
proteínas fijadoras de penicilina (PFP[Iiteratura
Castellana] o PBP's [literatura anglosajonal] ' (8, 11),
proteínas enzimáticas que catalizan las reacciones de
transpeptidación y carboxipeptidación durante la
síntesis del peptidoglican, tanto en bacterias Gram
positivas como en Gram negativas. Cuando el
carbapenémico se une inicialmente a PBP2 y
subsecuentemente a PBP1 a, causa lisis bacteriana (3, 8,
11, 14, 15). Sin embargo, en bacterias Gram negativas, y
particularmente en Escherichia coli. Imipenem se
une principalmente a PBP2 y posteriormente a PBP1 a/lb.
Esto establece una notable diferencia con las
aminopenicilinas y cefalosporinas, cuyo blanco principal
es la PBP3 (16). Esta propiedad tendría la ventaja, al
menos teóricamente, que no induciría la, formación de
filamentos, produciendo así menor liberación de
lipopolisacárido en comparación con lo que ocurre con
una cefalosporina (17, 18, 19, 20, 21, 22).
Sobre bacterias Gram positivas,
particularmente Staphilococcus spp. resistente a
meticilina (SRM), la afinidad de los carbapenémicos
sobre la PBP 2' presente en este tipo de microorganismos,
es baja. Por esto los carbapenémicos de gran
utilización clínica a nivel mundial, no constituyen una
alternativa adecuada para el tratamiento de infecciones
causadas por SRM (8,11). Imipenem no es hidrolizado por
la mayoría de las b-lactamasas sean penicilinas o
cefalosporina mediadas por plasmidios o de origen
cromosomal, de cepas de S. aureus.Escherichia coli.
Enterobacter cloacae, Citrobacter freundii. Proteus
rettgeri. Serratia marcescens. Proteus vulgaris,
Klebsiella oxytoca, Pseudomonas aeruginosa, Burkholderia
cepacia y Bacteroides fragilis (8,11,13,23,24,25).
Resistencia
Sin embargo, al momento actual aumentan
los reportes de resistencia mediana ya sea por enzimas
capaces de degradar al antibacteriano (25, 26, 27, 28,
29, 30, 31), o por fenómenos de impermeabilidad dados
por alteración de proteínas de membrana externa
(porinas) y/o alteración de lipopolisacárido (32, 33,
34, 35, 37, 38) y finalmente por alteración del
"target" del antimicrobiano, esto es
alteración de PBP' s (39, 40, 41). La resistencia ya sea
mediana por producción de enzimas capaces de inactivar
al Imipenem (carbapenemasas) y/o por fenómenos de
impermeabilidad constituyen los mecanismos de resistencia
de mayor importancia desde el punto de vista clínico (8,
11, 25); así la resistencia por hidrólisis del
antibacteriano tiene particular importancia en Stenotrophomonas
maltophilia y en Aeromonas spp. (8, 11,
25, 42) aunque también se han descrito casos de
resistencia en algunas cepas de Bacillus spp.,
Bacteroides spp., Flavobacterium spp.,
Burkholderia cepacia, Acinetobacter baumannii,
Pseudomonas aeruginosa, Serratia marcescens, Enterobacter
cloacae (25, 41, 42). Además se han descrito cepas
de Enterobacter cloacae hiperproductoras de
Beta-lactamasas cromosomales inducibles del grupo 1 de
Richmond-Sykes, capaces de inactivar eficientemente
cefalosporinas de tercera generación y algunas de ellas
de hidrolizar lentamente carbapenémicos (11) y
deficientes en alguna proteína de membrana externa, lo
que ha facilitado la hidrólisis del carbapenémico en el
espacio periplásmico, dada su escasa penetración y la
elevada producción de estas enzimas (11, 13, 43, 44,
45).
Uno de los mejores ejemplos de
impermeabilidad como mecanismo d resistencia a
carbapenémicos el presente en cepas de P. aeruginosa
resistentes a Imipenem, en las que se ha verificado
la pérdida o menos expresión de una proteína de
membrana externa conocida como OprD2 o simplemente OprD,
porina, mediaría la penetración intracelular del
carbapenémico (14, 41, 42); habiéndose descrito
también la asociación de impermeabilidad con inducción
de betalactamasas (42, 46), particularmente por una
experiencia en que se usó BRL 42715 un potente inhibidor
de betalactamasas cromosomales, obteniéndose en la cepa
de P. aeruginosa estudiada, un aumento en la
susceptibilidad a Imipenem (41, 42, 47).
Uso clínico
El uso de Imipenem debe reservarse
fundamentalmente para infecciones severas como sepsis,
neumonía, infecciones urinarias complicadas, meningitis,
y endocarditis producidas por Enterobacteriaceae
resistentes a cefalosporinas, quinolonas y/o
aminoglicósidos, particularmente aquellas infecciones
producidas por cepas hiperproductoras de betalactamasas
cromosomales inducibles de la Clase 1 de Richmond-Sykes,
especialmente de los géneros Enterobacter, Serratia,
Citrobacter, Morganella, Providencia, Proteus
indolpositivos (8, 11, 13, 24, 48, 49, 50, 51).
De particular importancia en el éxito terapeútico
es la asociación de un segundo agente bactericida que
permita obtener sinergia, siendo en principio la
asociación de un aminoglicósido una alternativa
razonable, siempre y cuando se haya evaluado
cuidadosamente la posibilidad de toxicidad (50, 52, 53,
54).
También debe considerarse como agente
de elección en infecciones severas por Acinetobacter
spp. cuando el cuadro de base del paciente, su estado
general, junto con la evaluación clínica y
microbiológico hagan menos aconsejable el uso de otros
agentes como ampicilina-sulbactam, amoxicilina-sulbactam
o piperacilina-tazobactam (50, 55, 56, 57, 58). Para
algunos también debe plantearse la adición de un
segundo agente
antibacteriano en el tratamiento de
cuadros sépticos severos producidos por cepas de estos
bacilos no fermentadores (50), junto a lo anterior debe
considerarse los resultados de Zemelman y col (24) que
demostraron la eficaz acción bactericida en el tiempo de
Imipenem Acinetobacter baumannii.
En las infecciones producidas por Pseudomonas
aeruginosa Imipenem no debe ser considerado como
agente de elección en monoterapia, particularmente en
neumonías, dado que existen evidencias de fracaso
terapeútico (11, 41, 50, 59, 60), siendo en términos
Generales más aceptado, dependiendo del sitio, gravedad
de la infección y estudios de susceptibilidad local, el
uso ya sea de penicilinas antipseudomonas asociadas o no
a inhibidores de b-lactamasas más aminoglicósidos y/o
quinolonas, u otras asociaciones entre estos
antimicrobianos (61, 62).
Otra indicación del uso de Imipenem es
en el tratamiento de infecciones severas que aquejan
pacientes que han recibido otros esquemas antibacterianos
sin un resultado terapeútico satisfactorio,
particularmente por la posibilidad de encontrar como
agentes etiológicos bacterias resistentes al resto de
los beta-lactámicos (8, 11, 13, 41).Si bien, los
carbapenémicos han demostrado utilidad y resultado al
menos comparables a esquemas asociados en el tratamiento
de pacientes neutropénicos febriles (8, 11, 63, 64, 65),
al momento actual no parece aconsejable en nuestro medio
el uso de imipenem como monoterapia, ni tampoco como
agente de primer línea en pacientes neutropénicos
febriles, en parte, por el importante aumento en el
aislamiento de cocos Gram positivos resistentes y hongos
(65, 66, 67, 68, 69), junto a lo elevado de su costo
(70), por la presión selectiva que se ejerce (42,
71) y por contarse con antimicrobianos de menor costo que
asociados pueden actuar de manera eficiente sobre los
microorganismos que habitualmente complican a este tipo
de pacientes, en especial cuando los patrones de
susceptibilidad a nivel local demuestran particularmente
sobre bacilos Gram negativos la posibilidad de usar otros
agentes antimicrobianos.
Imipenem presenta además de su elevada
actividad sobre bacilos Gram negativos aerobios (41) una
notable actividad bactericida sobre anaerobios (13, 72),
por lo que su uso como monoterapia en infecciones
polimicrobianas como las derivadas de un foco
intraabdominal, ha demostrado claramente resultados
favorables (41, 73, 74). Sin embargo, dado que la
asociación de dos o tres agentes pueden producir
resultados comparables y a menor costo (75); o que si se
insiste en una monoterapia existen alternativas al menos
tan eficientes y más baratas, como el uso de
beta-lactámicos con inhibidores de beta-lactamasas, al
momento actual no parece recomendable el uso de Imipenem
como terapia de primera línea para este tipo de
infecciones (8, 11, 76, 77).
Finalmente queremos enfatizar que lo
carbapenémicos actualmente en uso clínico no son
antibióticos útiles en la infección por Staphylococcus
spp. resistentes a meticilina por lo que no deben
usarse en infecciones comprobadas o en que se sospecha
que sea una bacteria de este género la que produce la
infección y que el uso racional de lo antimicrobianos y
de Imipenem en particular es una de las herramientas
fundamentales par controlar el cada vez más creciente
problema de la resistencia bacteriana a los
antimicrobianos (78).
ACTIVIDAD
ANTIBACTERIANA
TABLA 1
Espectro antibacteriano del
Imipenem
SUSCEPTIBILIDAD
|
ESPECIES |
Por
lo regular, altamente susceptibles
(CMI90 menor o igual a 1 Ug/ml) |
Acinetobacter
spp.
Bacteroides spp.
Citrobacter spp.
Enterobacter spp
Escherichia coli
Fusobacterium spp. Haemophilus influenzae
Listeria monocytogenes
Moraxella Catarrhalis Morganella morgannii
Neisseria gonorrhoeae
Neisseria meningiditis
Proteus spp.
Providencia spp.
Salmonella spp
Shigella spp.
SASM
SCNSM
Streptococcus pneumoniae
(susceptible a penicilina). Streptococcus
pyogenes
Streptococcus spp.
Yersinia enterocolitica. |
Susceptibilidad
variable
(CMI90 > 1 y menor o igual a 8 Ug/ml) |
Pseudomonas
aeruginosa
SerratiaStreptococcus
pneumoniae (susceptibilidad intermedia a
penicilina y resistentes a penicilina)
Enterococcus faecalis
|
Resistentes
en términos generales
(CMI90 > 8 Ug/ml) |
SARM
SCNRMCorynebacterium
jeikeium Enterococus faecium Stenotrophomonas
maltophilia
Burkholderia cepacia
|
Adaptado de: 8, 11, 13,
24, 41
SASM: Staphylococcus aureus susceptible a
meticilina
SARM: Staphylococcus aureus resistente a
meticilina
SCNSM: Staphylococcus coagulasa negativa
susceptible a meticilina
SCNRM: Staphylococcus coagulasa negativa
resistentes a meticilina
BIBLIOGRAFIA
- Kahan JS, Kahan FM, Goegleman R,
et al. Thienamycin, a new beta-lactam antibiotic.
l. Discovery, isolation and physical properties.
J Antibiot. 1979; 32:1-12.
- Tally FP, Jacobus NV, Gorbach SL.
IN vitro activity of thienamycin. Antimicrob
Agents Chemother. 1978; 14:436-438.
- Moellering RC, Eliopoulos &
Sentochnik DE. The carbapenems: new broad
spectrum b-lactam antibiotics. J.Antimicrob.
Chemother. 1989; 24(Suppl A): 1-7.
- Wise R, LAndrews JM & Patel N.
Nformimidoyl-thienamycin a novel b-lactam: an in
vitro comparison with other b-lactam antibiotics.
J. Antimierob. Chemother. 1981; 7:521-529.
- Neu HC. Clinical perspectivas on
imipenem. J. Antimicrob. Chemother. 1983;
12(Suppl D): 149-153.
- Livermore DM. Evolution of
b-lactamase inhibitors. Intensive Care Med. 1904;
20 (Suppl): 10-13
- Tally FP, Jacobus NV, Gorbach SL.
In vitro activity of N-formimidoyl thienamycin
(MK0787). Antimicrob Agents Chemother. 1980;
18:642-644.
- Norrby SR. Carbapenémicos. Clin
Med Norteam. 1995; 4:731-743.
- Zac O, Lang M, Cozens R, et al.
Penems: in vitro and in vivo experiments. J.
Clin. Pharmacol. 1988;28:128-135.
- Soon Kim H & Cmpbell Bj.
b-lactamase activity of renal dipeptidase against
Nformimidoyl-thienamycin. Biochem. Biophys. Res
Coom. 1982; 108:1638-1642.
- Balfour JA, Bryson HM 6 Brogden
RN. Imipenem / Cilastatin. An update of its
antibacterial activity, pharmacokinetics and
therapeutic efficacy in the treatment of serious
infections. Drugs 1996; 51:99-136.
- Gootz TD. Discovery and
development of new antimicrobial agents. Clin
Microb Rev. 1990; 3:13-31.
- ChambersHF&NeuHC. Other
b-lactam antibiotics. En: Mandell GL, Bennett JE
y Dolin R. Eds. Principles and Practice of
Infeetious Diseases. New York Churchill
Livingstone, 1995:264-272.
- Nikaido H. Outer membrane barrier
as a mechanism of antimicrobial resistance.
Antimicrob Agents Chemother. 1989; 33:183-1836
- Wise R. In vitro and
pharmacocinetic properties of the carbapenems.
Antimicrob Agents Chemother. 1986; 30:343-349.
- Curtis NC. 1981.
Penicillin-binding proteins in theory and
practice. J. Antimicrob. Chemother.1981; 8:85-59.
- Jackson JJ, Kropp H. B-lactam
antibioticinduced release of free en dotoxin: In
vitro comparison of penicillin-binding protein
(PBP) 2-specific imipenem and PBP 3-specific
ceftazidime. J. Infect Dis. 1992; 165:1033-1041.
- Neu HC. Carbapenems: special
propeties contributing to their activity. Am J
Med. 1985; 78:33-40
- Jackson JJ, Kropp H. Reply:
beta-lactam antibiotic-induced release of
lipopolisacchariede. J. Infect. Dis 1993;
167:775-777.
- Jackson JJ, Kropp H. Endotoxin
liberation: influence on in vivo beta-lactam
antibiotic efficay. In Gram negative infections
and sepsis: from basic concepts to clinical
chemotherapy. Proccedings of a satellite
symposium held March 26,1995 in Vienna, Austria,
in conjunction with the 7 the European Congress
of Clinical Microbiology and Infectious Diseases,
1995.
- Yokochi T, Kusumi A, Kido N et al.
Differential release of smooth-type
lipopolisaccharide from Pseudomonas aeruginosa
treated with carbapenem antibiotics and its
relation to production of tumor necrosis alpha
and nitric oxide. Antimicrob Agents Chemother.
1996;40 :2410-2412.
- Bucklin SE & Morrison DC.
Bacteremia versus endotoxemia in experimental
mouse leukopenia role of antibiotic chemotherapy.
J Infect Dis. 1996;174 :1249-1254.
- Philippon A, Labia R & Jacoby
G. Extended-spectrum ?-lactamases. Antimicrob
Agents Chemother. 1989;33: 1131-1136.
- Zemelman R, Bello H, Domínguez M
et al. Activity of imipenem, third-generation
cephalosporins, aztreonam and ciprofioxacin
against multiresistant Gram negative bacilli
isolated from chilean hospital. J Antimicrob
Chemother 1993;32 :413-419.
- Amyes SGB & Gemmell CG.
Antibiotic resistance. J Med Microbiol. 1997;46:
436-470.
- Scaife W, Young HK, Paton RH &
Amyes SGB. Transferable imipenem-resistance in
Acinetobacter species from a clinical source. J
Antimicrob Chemother. 1995;36: 585-587.
- Marumo K, Nagaki T & Nakamura
Y. Evaluation of high-level carbapenem resistance
in atypical Serratia marcescens by a comparison
with its revertants. J Antimicrob Chemother.
1996;37:47-58.
- Shannon K, King A, Phillips I.
Blactamases with high activity against imipenem
and Sch 34343 from Aeromonas hydrophila. J
Antimicrob Chemother. 1986; 17:45-50.
- Bakken JS, Sanders CC, Clark RB,
Hori M. ?-lactam resistance in Aeromonas spp.
caused by inducible B-lactamases active against
penicillins, cephalosporins, and carbapenems.
Antimicrob Agent Chemother. 1988;32:1314-1319.
- laconis JP, Sanders CC.
Purification and characterization of inducible
?-lactamases in Aeromonas spp. Antimicrob Agents
Chemother. 1990;34:44-51.
- Watanabe M, Iyobe S, Inoue M, et
al. transferable imipenem resistance in
Pseudomonas aeruginosa. Antimicrob Antimicrob
Agents Chemother. 1991;35:147-151.
- Hopkins JM & Towner KJ. .
Enhanced resistance to cefotaxime and Imipenem
associated with outer membrane protein
alterations in Enterobacter acrogenes. J.
Antimicrob Chemother. 1990; 25:49-55.
- Courvalin R Evasion of antibiotic
action by bacteria. J. Antimicrob Chemother.
1996;37:855-869.
- Buscher KH, Cullman W. Dick W,
Opferkuch W. Imipenem resistance in Pseudomonas
aeruginosa resulting from diminished expression
of an outer membrane protein. Antimicrob Agents
Chemother. 1987; 31:703-708.
- Trias J, Nikaido H. Protein D2
channel of the Pseudomonas aeruginosa outer
membrane has a binding site for basic camino
acids and peptides. J Biol Chem. 1990;
265:15680-15684.
- Perez FJ, Gimeno C, Navarro D,
Garcia de Lomas J. Meropenem permeation through
the out membrane of Pseudomonas aeruginosa can
involve pathways other than the Opr D porin
channel. Chemotherapy. 1996; 42:210-214.
- Clark RB. Imipenem resitance among
Acinetobacter baumannii: association with rediced
expression of a 33-36 kda outer membrane protein.
J Antimicrob Chemother. 1996;38:245-251.
- Neuwirth C, Siébor E, Duez JM et
al. Imipenem resistance in clinical isolates of
proteus mirabilis associated with alterations in
penicillin-binding proteins. J Antimicrob
Chemother. 1995; 36:336-342.
- Gehrlein M, Leying H, Cullman W et
al. Imipenem resistance in Acinetobacter baumanni
is due to altered penicillin bindingproteins.
Chemotherapy. 1991; 37:405-412.
- Nordmann P. Nicolas MH, Gutmann L.
Penícillin-binding proteins of Rhodococcus equi:
potencial role in resistance to imipenem.
Antimicrob Agents Chemother. 1993; 37:1406-1409.
- Wiseman LR, Wagstaff AJ, Brogden
RN & Bryoson HM. Meropenem. A review of
antibacterial activity, pharmacokinetie
properties and clinical efficacy.1995; Drugs
50:73-101
- Medeiros AA. Evolution and
dissemination of b-lactamases accelerated by
generations of b-lactam antibiotics. Clin Infect
Dis. 1997; 24(Suppl 1): 19-45.
- Georghiou PR, Hamill RJ, Wright CE
et al. Molecular epidemiology of infections due
to Enterobacter aerogenes: identification of
hospital out break-associated strains by
molecular techniques, Clin Infect Dis. 1995;
20:84-94.
- Charrel RN, Pagès JM, De Micco P
& Mallea M. Prevalence of outer membrane
porin alteration in b-lactam-antibioticresistant
Enterobacter aerogenes. Antimicrob Agents
Chemother 1996; 40:2854-2858.
- Hopkins JM & Towner KJ.
Enhanced resistance to cefotaxime and imipenem
associated with outer membrane protein
alterations in Enterobacter aerogenes J
Antimicrob Chemother. 1990;25:49-55.
- Livermore DM. Interplay of
impermeability and chromosomal b-lactamase
activity in ímipenem-resistant Pseudomonas
aeruginosa. Antímícrob Agents
Chemother.1992;36:2046-2048.
- Zhou XY, Kitzis M, Gutman L. Role
of cephalosporinase in carbapenem resistance of
clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa.
Antimicrob Agents Chemother. 1993;37-387-389.
- López-Yeste ML, Xercavins M, Lite
J, et al. Resistencia a fluorquinolonas y
aminoglicósidos en cepas hiperproductoras de
cefalosporinasa cromosómica de bacilos Gram
negativos con betalactamasa inducible. Enferm
Infecc Mierobiol Clin. 1996; 14:211-214.
- Garau J. Beta-lactamases, current
situation and clinical importance. Intensive Care
Med. 1994;(Suppl)20:5-9
- Rybak MJ & McGrath BJ,
Combination antimicrobial therapy for bacterial
infections. Drugs. 1996;52:390-405.
- Toltzis P, Blumer JL.
Antibiotic-resistant gram negative bacteria in
the critical care setting. Pediatr Clin North Am.
1995;42 :687-699.
- Moellering RC. Principles of
antiinfective therapy. En: Mandell GL, Bennet JE
y Dolin R. Eds, Principles and Practice of
Infectious Diseases. New York: Churchill
Livingstone; 1995:199-212.
- Bryant RE, Fox K, Oh G &
Morthland VH. b-lactam enhancement of
aminoglicoside activity under conditions of
reduced ph and oxygen tension that may exist in
infected tissues. J Infect Dis. 1991;
165:676-682.
- Mella S, García A, Aguilera LE
& Zemelman R. Antibióticos aminoglicósidos,
Agrupación según se estructura química y
actualización sobre algunas de sus propiedades.
Acta Microbiológica. 1993;1:5-13.
- Bergogne-Bérézin, E. &
Towner KJ. Acinetobacter spp. as nosocomial
pathogens: microbiological, clinical, and
epidemiological features. Clin Microbiol. Rev
1996;9:148-165.
- Bello H, González G, Domínguez M
et al. Activity of selected b-lactams,
ciprofloxacin, and amikacin against diffrent
Acinetobacter baumannii biotypes from chilean
hospitals. Diag Microbiol Infect Dis. 1997; 28(1)
En prensa.
- Suh B, Shapiro T, Jones R et al.
In vitro activity of b-lactamase inhibitors
against clinical isolates of Acinetobacter
species. Diag Microbiol Infect Dis.
1995;21:111-114.
- Seifert H, Strate A & Pulverer
G. Nosocomial bacteremia due to Acinetobacter
baumannii. Medicine 1995;74:340-349.
- Niederman MS. An approach to
empiric therapy of nosocomial pneumonia. Med Clin
North Am. 1994;78:1123-1141.
- Fink MP, Snydman DR, Niederman MS
et al. Treatment of severe pneumonia in
hospitalizad patients: results of a multicenter,
randomized double -bind trial comparing,
intravenous ciprofloxacin with
imipenem-cilastatin. Antimicrob Agents Chemother.
1994;38:547-557.
- Menzies B, Gregory DW.
Pseudomonas. En: Schlossberg D. Ed. Current
therapy of infectious diseases. St Louis,
Missouri: Mosby-Year Book; 1996:446-450.
- Pollack M. Pseudomonas aeruginosa.
En: Mandell GL, Bennett JE y Dolin R. Eds
Principles and Practice of Infectious Diseases.
New York: Churchill Livingstone; 1995:1980-2003.
- Pérez C, Sirhma M, Labarca J et
al. Imipenem/cilastatina versus
ceftazidima-amikacina para el tratamiento de
pacientes neutropénicos febriles. Rev Méd.
1995;123.312-320.
- Romero Vivas J, Corrall O, Rubio
M. Infecciones en pacientes neutropénicos: bases
para la elección del tratamiento antimicrobiano.
Rev Esp Quimioterapia. 1993;6:23-32.
- Giamarellou H. Tratamiento
empírico del huésped inmunodeficiente, febril y
neutropénico. Clin Med Norteam. 1995,3:557-577.
- Spanik S, Trupl J, Kunova A et al.
J Med Microbiol. 1997;46:517-523.
- Van der Auwera P, Aoun M &
Meunier E Randomized study of vancomycin versus
teicoplanin for the treatment of gram positive
bacterial infections in immunocompromised hosts.
Antimicrob Agents Chemother. 1991;35:451-457.
- Koll BS & Brown AE. The
Changing epidemiology of infections at cancer
hospitals. Clin Infect Dis. 1993; 17(Suppl):
332-328.
- Uzun O & Anaissie EJ.
Antifungal prophylaxis in patients with
hematological malignancies: a reappraisal. Blood.
1995;86:2063-2072.
- Pepe R, Schlossberg D.
Antimicrobial Agents Tables. En: Schlossberg D.
Ed. Current Therapy of Infectious Disease. St.
Louis, Missouri. Mosby-Year Book, Inc.
1996:623-652.
- Bodey G, Abi Said D, Rolston Ket
al. Imipenem or cefoperazone-sulbactam combined
with vancomycin for therapy of presunted or
proven infection in neutropic cancer patients.
Eur J Clin Microbiol Infect Dis. 1996;
15:625-634.
- Rasmusen BA, Bush K & Tally
FP. Antimicrobial resistance in anaerobes. Clin
InfectDis. 1997;24(Suppl 1): 110-120.
- Uhari M, Seppánen J, Heikkinen E.
Imipenem - cilastatin vs. tobramycin and
metronidazole for appendicitis-related
infections. Pediatr Infect Dis J, 1992; 1
1:445-450.
- Geroulanos S, Stern A, Christen D
& Buchmann P. Antimicrobial management of
postoperative infections in abdominal sugery:
single or combination regimen? Clin Therapeutics.
1990; 12(Suppl B): 34-42.
- Mandell LA, Turgeon PL, Ronalds,
AR. A prospective randomized trial of
imipenem-cilastatin versus clindamycin-tobramycin
in the treatment of intrabadominal and pelvic
infections. Can J. Infect Dis. 1993-4:279-287.
- Gorbach SL.
Piperacillin/tazobactam in the treatment of
polymicrobial infections. Intensive Care Med.
1994;(Suppl 3)20 :27-34.
- Nord CE. The treatment of severe
intraabdominal infections: the role of
piperacillin/tazobactam. Intensive Care Med.
1994;(Suppl 3)20:35-38.
- Goldmann DA. & Huskins WCh.
Control of nosocomial antimicrobial-resistant
bacteria: a strategic priority for hospitals
worldwide. Clin Infect Dis. 1997; 24 (Suppl
1):139-147.
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